Kuidas ilma desinfitseerimiskambrita raviasutuses hakkama saada. Põhilised tööreeglid
Desinfitseerimiskambrid (paigaldised) on statsionaarsed või mobiilsed sanitaarruumid, mis on ette nähtud desinfitseerimiseks ja riiete desinfitseerimiseks, voodipesu, kingad ja muud asjad.
Sõltuvalt kasutatavast soojusvahendist jaotatakse desinfitseerimiskambrid aur-õhk (aur-formaliin), aur ja kuumõhk. Auru-õhu desinfitseerimiskambrites kuumutatakse asju auruga temperatuurini 80–98 ° atmosfääri rõhk(ilma õhunihketa). Pihustusotsiku või aurustusaparaadiga varustatud kambrid on samal ajal ka auru-formaliini desinfitseerimiskambrid, mis võimaldavad nahka, karusnahku ja muid asju desinfitseerida temperatuuril 40-59 °. Aurudesinfitseerimiskambrites toimub asjade desinfitseerimine auruga temperatuuril 100 ° ja kõrgemal atmosfäärirõhul või kergel ülerõhul.
Kuuma õhu desinfitseerimiskambreid kasutatakse riiete, voodipesu ja muude esemete desinfitseerimiseks. Nendes kambrites on toimeaineks kuiv kuum õhk, mille temperatuur on 80-120°.
Statsionaarseid desinfitseerimiskambreid kasutatakse meditsiiniasutustes ülerõivaste, voodipesu ja jalatsite desinfitseerimiseks ja desinfitseerimiseks; jagunevad aur-õhk (aur-formaliin) ja aur.
Statsionaarsed desinfitseerimiskambrid varustatud kärudega desinfitseeritud esemete riputamiseks (ladumiseks) ja transportimiseks, võimsate ventilatsiooni- ja kütteseadmete, elektrivalgustuse ja signalisatsiooniga. Ruum, kuhu desinfitseerimiskamber on paigaldatud, on tühja vaheseinaga jagatud kaheks: laadimiskambriks (“määrdunud”) ja mahalaadimiseks (“puhas”).
Riis. 1. Statsionaarne desinfitseerimiskamber KDF-3.
Riis. 2. Statsionaarne desinfitseerimiskamber DKSK-1.8.
Statsionaarses kambris KDF-3 mahuga 3,2 m 3 (joonis 1) soojendatakse spetsiaalsele kärule asetatud desinfitseeritud esemeid põrandal asuvate perforeeritud torude kaudu tuleva auruga. Kamber on varustatud ventilatsiooni- ja küttesüsteemiga, mida kasutatakse töödeldud esemete kuivatamiseks. Juhtpaneelil asuvad aurukäivitusventiilid ja lehter formaliini aurustisse valamiseks.
Statsionaarne kamber DKSK-1.8 (joonis 2) on monteeritud kahele eraldi alusele: ühel kamber ise, teisel aurukatel. Kamber on saadaval ka ilma boilerita tsentraliseeritud auruvarustuseks.
Desinfitseerimiskamber DKS-1.8 on terasplekist keevitatud korpus, mis on ümbritsetud terasrõngastega. Kambril on kaks ust asjade peale- ja mahalaadimiseks. Varem riidepuudele pandud riided riputatakse lae alla venitatud nööridele. Temperatuuri kambris juhitakse elavhõbedatermomeetriga.
Statsionaarne desinfitseerimiskamber KDFO-2 on toodetud aurukatlaga SZM-1, mis on ette nähtud rõhule kuni 0,7 kgf/cm 2.
Tööstuses toodetud statsionaarsete desinfitseerimiskambrite peamised parameetrid ja mõõtmed on toodud tabelis 1.
Venemaa Föderatsioon MUK ( Juhised)
MUK 4.2.1035-01 Desinfitseerimiskambrite kontroll
määrake järjehoidja
määrake järjehoidja
MUK 4.2.1035-01
METOODILISED JUHISED
4.2. KONTROLLI MEETODID.
BIOLOOGILISED JA MIKROBIOLOOGILISED TEGURID
DESINFITSEERIMISKAMBRITE KONTROLL
Tutvustuse kuupäev 2001-10-01
KINNITUD Vene Föderatsiooni riikliku sanitaarpeaarsti, Vene Föderatsiooni tervishoiuministri esimese asetäitja G. G. Oništšenko poolt 23. mail 2001
1. Üldsätted ja ulatus
1.1. Need MUK-id on koostatud 1995. aastal heaks kiidetud "Desinfitseerimiskambrite kontrolli juhendi" alusel.
1.2. Juhend on mõeldud spetsialistidele, kes kontrollivad desinfitseerimiskambrite tööd.
1.3. Asjade usaldusväärse desinfitseerimise tagamiseks alluvad Vene Föderatsiooni tervishoiuministeeriumi organisatsioonides või muudes osakondades asuvad desinfitseerimiskambrid tehnilisele, termilisele ja bakterioloogilisele kontrollile.
Desinfitseerimiskambrite kontrolli teostavad plaanipäraselt vastavat tegevusluba omavad desinfitseerimisprofiiliga organisatsioonid, vähemalt kord kvartalis.
2. Tehniline kontroll
2.1. Tehniline kontroll Desinfitseerimiskambrite eesmärk on kindlaks teha nii kambri kui ka selle seadmete (manomeeter, termomeeter, ventiilid), aga ka auru- ja õhukanalite töövõime.
2.2. Desinfitseerimiskambri ja selle seadmete terviklikkust saab määrata visuaalselt. Lisaks kasutatakse ventiilide töö, kambri või selle osade tiheduse, aurutorustike läbilaskvuse kontrollimiseks, testauru käivitamise ja proovikuumutamise meetodeid.
Kui pärast klapi sulgemist jätkab selle taga asuv toruosa soojenemist, siis näitab see klapi defekti (läbib auru). Need ventiilid tuleb parandada või välja vahetada.
2.3. Termomeetri näitude täpsust kontrollitakse järgmiselt: termomeetri näitude võrdlemise ajal kastetakse testtermomeeter koos kontroll- (kalibreeritud) termomeetriga vette, mis on kuumutatud vastavalt temperatuurini 60-80-90 ° C. Kontrollitud ja kontrolltermomeetri näitude erinevus ei tohi ületada +/-1 °С.
2.4. Manomeetrite töö kontrollimiseks kinnitatakse kolmekäigulise ventiili ääriku külge katsetatav manomeeter, paralleelselt ühendatakse kontrollmanomeeter ning testitava ja juhtseadme näitude erinevuse põhjal tehakse järeldus. on tehtud selle kasutuskõlblikkuse kohta.
Vigane manomeeter asendatakse uuega, testitakse ja pitseeritakse.
2.5. Formaliini peenlahuste valmistamiseks mõeldud düüsi õige töö määratakse ühe kahest meetodist:
2.5.1. Esimene, objektiivsem meetod on järgmine: düüsipaaki valatakse 200-300 ml kergelt toonitud vett (lisatakse tinti, magenta, sinine), seinale tugevdatakse ekraani (valge paberi või papi leht). düüsi vastas ja vedelik pihustatakse. Seejärel vaadake ekraani. Ühtlase jaotuse ja ülekaalu olemasolul väikesed laigud tehakse järeldus düüsi rahuldava töö kohta.
Laigude ebaühtlase jaotusega ja ülekaaluga suured laigud, määrdumised, triibud, tehakse järeldus düüsi ebarahuldava töö kohta. Viimane kuulub parandamisele, misjärel tuleks düüsi uuesti testida.
2.5.2. Teisel juhul eemaldatakse üks kaamera vihmavari ja kui sellel on sissetõmmatav riba, siis see pikendatakse. See võimaldab selgelt näha formaliini pihustava düüsi otsikut. Kui vihmavari koosneb kolmest osast, siis liigutage näidatud eesmärkidel vihmavarju keskosa kõrvale. Seejärel lase aur otsikusse ja avatud uks kaamerad jälgivad düüsi tööd, mille paak on eelnevalt veega täidetud. Kui vedeliku pihustamisel düüsiga on ülekaalus väikesed tilgad, loetakse düüsi töö rahuldavaks.
Kui ülekaalus on suured tilgad, mis langevad kohe pärast düüsi otsakust väljumist kambri põrandale, peetakse otsikut edasiseks tööks sobimatuks ja seda tuleb reguleerida.
2.6. Benjaminson-Krupini aparaati ("BK") kontrollitakse auruga katsetamisega. Selleks valatakse aparaadi paaki formaliin, milles formaldehüüdi kontsentratsioon määratakse eelnevalt laboris. Seejärel lastakse paaki aur, mis ekstraheerib formaldehüüdi keevast formaliinilahusest. Formaldehüüdi formaliinist eraldamise tõhusust tuleks kontrollida iga viie minuti järel alates hetkest, kui aur viiakse seadmesse, võttes läbi aparaadi tühjendusklapi formaliini koguses 10 ml.
Tuleks võtta neli sellist proovi: esimene - 5 minuti pärast, teine - 10 minuti pärast, kolmas - 15 minuti pärast, neljas - 20 minuti pärast.
Proovid saadetakse laborisse nende formaldehüüdisisalduse määramiseks ning nende analüüside põhjal koostatakse formaliinist formaldehüüdi ekstraheerimise dünaamika.
Reeglina formaldehüüd 3. proovis puudub (pärast 15 min). Äärmiselt harva leitakse see 4. proovis (20 minuti pärast).
Need tulemused annavad alust järeldada, et seade töötab üsna rahuldavalt. Kui formaliinilahuse 4. proovis on teatud kogus formaldehüüdi, siis tuleks testi korrata. Kui aga formaldehüüdi avastatakse teise kontrolli käigus, tuleb viies proov võtta 5 minutit pärast neljandat proovi. Kui selles formaldehüüdi ei leidu, siis tuleb "B-K" aparaadi tööd lugeda rahuldavaks, märkides, et formaldehüüdi täielik ekstraheerimine aparaadis olevast formaliinilahusest lõpeb alles 25 minuti pärast.
Kui proovis leitakse formaldehüüdi pärast 25-minutilist kokkupuudet, tuleks see seade "B-K" tunnistada edasiseks kasutamiseks sobimatuks ja võtta meetmeid seadme funktsionaalsete või struktuuriliste defektide kõrvaldamiseks.
2.7. Aurukambri KS-3 uste tihedust kontrollitakse aururõhul kambris 0,5 atm; auru-formaliinis - temperatuuril 80-97 ° C vastavalt nurktermomeetrile. Nendel tingimustel ei tohi aur kambri uste kaudu välja pääseda.
3. Soojusjuhtimine
3.1. Kuumutamise aste termilise desinfitseerimise kambrites määratakse objektiivse meetodiga - termomeetriga termomeetrite abil. Välise termomeetri gradueeritud osa asub väljaspool kambrit, selle elavhõbedakuuliga ots sisestatakse kambrisse.
Välitermomeetrid on saadaval kahte tüüpi: sirged ja nurga all.
Kogu desinfitseerimisprotsessi kambris juhib psühromeeter.
3.2. Temperatuuri dünaamika kambris registreeritakse järgmiste sammudega:
- temperatuur enne kambri kuumutamist;
- kaamera kuumutamine temperatuurini, mille juures algab särituse loendus;
- teatud temperatuuri hoidmine kokkupuute ajal.
Kõik ülaltoodud temperatuurinäidud salvestatakse kaamera tööprotokolli.
3.3. Kambri välistermomeetrite näidud näitavad ainult kambris oleva õhu ja auru temperatuuri, kuid mitte temperatuuri, mis sellel ajavahemikul kambris desinfitseeritud asjades oli. Temperatuuri määramiseks desinfitseeritud asjades kasutatakse maksimaalseid termomeetreid, mis annab bakteritsiidse (insektitsiidse) toime.
Desinfitseerimise efektiivsus desinfitseerimiskambrites ei sõltu ainult nõutavast temperatuurist kambris, vaid ka selle ühtlasest jaotumisest kambrisse laaditavates asjades.
3.3.1. Temperatuuri jaotuse ühtlus kambri erinevates kohtades olevates asjades määratakse nii vertikaalselt (riiete krae ja taskute tasemel) kui ka horisontaalselt (kambri esiosas olevates asjades - mahalaadimisruumi ukse ees kambrist; kambri keskosas asuvates asjades ja kambri laadimisukse poole jäävates asjades). Temperatuuri jaotuse ühtsuse määramine asjade sees toimub 9 või 15 maksimaalse termomeetri abil, sõltuvalt kambri mahust.
3.3.2. Laadimiskambris tuleks maksimaalsed termomeetrid asetada asjade paksusele (kraede alla, taskutesse või riiete voltidesse). Selleks asetatakse termomeetrid spetsiaalsetesse kottidesse koos katseobjektidega ja asetatakse 9 punkti vastavalt skeemile, mis sarnaneb ümbriku tihendite paigutusega, kahel tasandil: kambri ülemisse ja keskmisesse ossa.
Desinfitseerimiskambri maht >2 m
Desinfitseerimiskambri maht 2 m
Selline termomeetrite paigutus võimaldab teil saada teavet temperatuurirežiimi kohta kambri erinevates osades. Dezkaamerate temperatuuri reguleerimisel on tavaks lisada veel üks termomeeter, mis asetatakse kambrisse nurgatermomeetri tasemele ja on mõeldud viimase näitude kontrollimiseks.
3.4. Temperatuuri ühtlase jaotumise korral kambris olevates asjades on termomeetrite näitude erinevus (erinevus) lubatud järgmistes piirides:
- 3 °С - desinfitseerimiseks auruga;
- 5-7 °С - desinfitseerimiseks auru-õhk meetodil;
- 2-5 °С - desinfitseerimiseks auru-formaliini meetodil.
Sel juhul tuleb arvestada, et temperatuuri erinevuse alumine piir peab vastama välise termomeetri näitude järgi kontrollitava desinfitseerimisrežiimi alumisele piirile:
- 100-104 °С - desinfitseerimiseks auruga;
- 80-97 °С - desinfitseerimiseks auru-õhk meetodil;
- 49-57 °С - desinfitseerimiseks auru-formaliini meetodil.
3.5. Näidatud temperatuuriparameetrite lahknevuse põhjuseks võib olla kambri vale laadimine (kehtestatud laadimisnormide ületamine või kambri teatud kohtades ülepakkimine). Kui see põhjus on välistatud, on vaja hoolikalt uurida kaamera tehnilist seisukorda.
3.6. Maksimaalseid termomeetriid kontrollitakse süstemaatiliselt, mis viiakse läbi samamoodi nagu väliskambri termomeetrid (punkt 2.3.).
4. Seadmed, materjalid, laboriklaasid ja reaktiivid
4.1. Mõõtmine | |||
Üldotstarbelised 2. täpsusklassi laborikaalud | |||
Universaalne ionomeeter EV-74 või pH-340 potentsiomeeter | |||
Täitmiskolvid 2, 2. täpsusklass, nimimaht 50, 100, 200, 500, 1000 (cm) | |||
Mikroskoobi bioloogiline MBI-1, MBI-2 | GOST 8284-78 |
||
Täitmise pipetid 5, 1, 2 täpsusklass | |||
Termomeeter (elavhõbe) mõõtevahemikuga 0 kuni 100° | |||
4.2. Abiseadmed | |||
Bakteritsiidne seina kiiritaja OBM-150 või muud kaubamärgid | |||
Meditsiinilised pintsetid | |||
Termostaat, mis võimaldab hoida temperatuuri (15-65) ° C kõrvalekaldega seatud 1 ° C | TLÜ 64-1-1382-72 |
||
Majapidamise elektriline külmik | |||
Steriliseerimiskuivatuskapp ShSS-80P või muud kaubamärgid, mis võimaldavad hoida temperatuuri (160+/-5) °C | TLÜ 64-1-9009-74 |
||
Statiivid plastikust või metallist | |||
Paberil põhinev kleeplint | |||
Polümeer- ja kombineeritud materjalidest kotid | |||
4.3. Laboratoorsed klaasnõud ja materjalid | |||
Klaaspudelid kemikaalide jaoks | |||
Puuvillane meditsiiniline hügroskoopne | |||
Klaaslehtrid | |||
Emailitud pannid | GOST 24778-81 |
||
Meditsiiniline marli | |||
Bakterioloogiline silmus | |||
P1 tüüpi katseklaasid läbimõõduga 16 mm, kõrgusega 150 mm | |||
Alkohollambi laboriklaas | |||
Mikroskoobi slaidid | |||
Bioloogilised tassid (Petri) | |||
Ühekordselt kasutatavad mikroproovi katsutid (Eppendorfi torud) | TLÜ 64-2-300-80 |
||
insuliini viaalid | |||
4.4. Reaktiivid, söötmed | |||
Mikrobioloogiline agar | |||
Bromotümoolsinine | TLÜ 6-09-20-86-77 |
||
Destilleeritud vesi | |||
Rektifitseeritud etüülalkohol | |||
naatriumkloriid |
5. Bakterioloogiline kontroll
5.1. Kambris olevate asjade desinfitseerimise usaldusväärsuse bakterioloogilise kontrolli standardid on järgmised kultuurid:
- mitteeoseid moodustavate mikroobide põhjustatud nakkuskollete asjade töötlemisel - Staphylococcus aureus(Staphylococcus aureus), tüvi 906;
- asjade töötlemisel tuberkuloosikolletest - mittepatogeenne mükobakter (Mycobacterium), tüvi B-5;
- spoore moodustavate mikroobide põhjustatud nakkuskollete asjade töötlemisel eoste kujul (antrakoid) Bacillus cereus'e kultuur, tüvi 96.
5.2. Katsekultuuridel peavad olema tüüpilised omadused ja järgmine vastupidavus:
- Staphylococcus aureus - temperatuurile 60 ° C 25 minutit, 2% formaliini lahusele 20 minutiks;
- Mycobacterium, tüvi B-5, temperatuuril 60 °C 60 minuti jooksul, 5% formaliini lahusega 25 minuti jooksul;
- B.cereus'e eosed, tüvi 96, voolava auru toimel 4-6 minutit või keetmist 25 minutit.
5.3. Kultuuri stabiilsuse säilitamiseks tuleks hoida temperatuuril +4 °C. Staphylococcus ja B.cereus - liha-peptoonagaril (MPA) kolonnis steriilse kihi all vaseliiniõli; kultuur B-5 - kartuli-glütseriini söötmel või 2% glütserool-MPA-l. Kultuure saate hoida külmkuivatatud suletud ampullides. Staphylococcus, B.cereus ja B-5 töökultuuride uuesti külvamine peaks toimuma vähemalt kord 3 kuu jooksul.
6. Kasutatud bioloogiliste näitajate koostamine
kultuuride vastupidavuse määramiseks ja desinfitseerimiskambrite kontrollimiseks
6.1. Põllukultuuride formaliini- ja aurukindluse test viiakse läbi kambri- või kalikotsinguobjektidel. Nende valmistamiseks kastetakse tükike valget kambrit ehk kalikot 24 tunniks külma kraanivette, pestakse seejärel seebiga, keedetakse, kuivatatakse ja triigitakse kuuma triikrauaga (sõrmetuse eemaldamiseks). Ettevalmistatud kangatükis tõmmatakse niidid nõelaga välja pikisuunas üksteisest 11 mm kaugusel ja põikisuunas - 6 mm kaugusel. Seda mööda lõigatakse kangas kääridega katseobjektideks ja 50 tükki laotakse Petri tassidesse. Viimased pakitakse paberisse ja steriliseeritakse autoklaavis 30 minutit temperatuuril 120 ° C (1 atm).
6.2. Rakkude asjade desinfitseerimise efektiivsuse bioloogilise kontrolli indikaatorid on insuliiniviaalid kuivbakterite kultuuridega (bioloogiline indikaator BIK-ILC).
6.3. Bakterikultuurid valmistatakse järgmiselt:
6.3.1. Stafülokoki igapäevane puljongikultuur inokuleeritakse mikroorganismide kasvatamiseks mõeldud toitaineagari kaldpinnale ja inkubeeritakse termostaadis temperatuuril (37+/-1) °C 18-24 tundi.söötmes kontsentratsioonini 2-10 mc. 1 ml-s. Seejärel kantakse automaatse pipetiga 0,02 ml kultuurisuspensiooni otse insuliiniviaali või Eppendorfi tuubi alumisele sisepinnale. Insuliiniviaalid on suletud puuvillase marli korgiga. Viaalid ja Eppendorfi torud asetatakse üheks päevaks termostaadi temperatuurile 37 °C kuivama. Näitajad bioloogiline NIC-ILC hoitakse koduses külmikus. Kõlblikkusaeg - 1 aasta.
6.3.2. Mükobakteritüve B-5 kultuuri kasvatatakse kartuli-glütseriini söötmel või 2% glütserooltoiteagaril temperatuuril (37+/-1) °C 4 päeva. Seejärel lisatakse sahharoosi-želatiini sööde ja kasvatatud kultuur pestakse agari pinnalt steriilsete helmestega. Sama söödet kasutatakse kultuuri kontsentratsiooni viimiseks 2-10 mc-ni. 1 ml-s. Automaatse pipetiga kantakse 0,02 ml suspensiooni insuliiniviaali sisepinnale ja suletakse puuvillase marli korgiga. Pange termostaadi 37 ° C juures üheks päevaks kuivama. Bioloogilised näitajad BIK-ILC hoitakse külmkapis. Kõlblikkusaeg - 6 kuud.
6.3.3. Eoste saamiseks külvatakse B.cereus kultuur kaldus nisuagarile ja kasvatatakse kaks päeva termostaadis 37 °C juures ning seejärel veel 5-7 päeva toatemperatuuril pimedas kohas. Enne pesemist kontrollitakse kultuuri sporulatsiooni suhtes (Gram-värvitud määrdeid vaadatakse mikroskoobi all). Edasiseks tööks sobivad kultuurid, mis sisaldavad 5 vaatevälja vaatlemisel vähemalt 80-90% eoseid. Pärast seda pestakse kasvatatud kultuur pinnalt maha, kasutades sahharoosi-želatiini söödet ja steriilseid helmeid. Seejärel reguleeritakse eoste kontsentratsioon 2-10 mikronini. 1 ml-s. Automaatse pipetiga kantakse insuliiniviaali või Eppendorfi tuubi sisepinnale 0,02 ml suspensiooni. Insuliiniviaalid on suletud puuvillase marli korgiga. Viaalid ja Eppendorfi torud asetatakse üheks päevaks termostaadi temperatuurile 37 °C kuivama. Kõlblikkusaeg - 1 aasta.
7. Kultuuride resistentsuse määramine formaliini toimele
7.1. Katsepäeval valmistatakse formaliini töölahused steriilses destilleeritud vees. Lahuse kontsentratsioon võetakse sõltuvalt kultuuri tüübist (Staphylococcus aureus, tüvi 906, resistentsust testitakse 2% lahuses ja Mycobacterium kultuuri tüve B5 resistentsust testitakse 5% formaliini lahuses ). Katsete seadistamisel valatakse pipetiga klaaskolbi vajalik kogus vastavat formaliini lahust (iga katseobjekti kohta 3 ml). Kolbi kergelt loksutades niisutatakse kõik katseobjektid desinfitseerimislahusega ja sellest hetkest algab kokkupuute loendus. 10-20-30 minuti pärast (Staphylococcus aureus, tüvi 906 kultuuride puhul) ja 15-25-35 minuti pärast (Mycobacterium'i tüve B-5 kultuuriga nakatunud testide puhul) eemaldatakse formaliini lahusest 2 testitavat objekti. steriilsete pintsettidega ja kastetakse neutraliseerimiseks katseklaasidesse 10 ml 2% ammoniaagilahusega (1 ml 25% ammoniaak+ 9 ml steriilset destilleeritud vett). 5 minuti pärast viiakse katseobjektid teise katseklaasi 10 ml steriilse soolalahusega ja hoitakse 5 minutit. Seejärel inokuleeritakse iga katseobjekt katseklaasidesse 5 ml sobiva vedela toitekeskkonnaga.
7.2. Kontrolliks on kaks testitavat objekti, mis ei ole formaliiniga kokku puutunud, vaid on sukeldatud steriilse soolalahusega katseklaasi ajavahemikuks, mis on võrdne formaliini toimega. Kontrollkatseobjektid pestakse enne külvi samamoodi nagu katseobjekte.
7.3. Põllukultuurid asetatakse termostaadi temperatuurile (37+/-1) °C. Esialgseid tulemusi võetakse arvesse 24-48 tunni pärast (Mycobacterium, B-5 tüvega testides 4 päeva pärast), lõplikud tulemused 7 päeva pärast.
8. Põllukultuuride soojustaluvuse määramine
8.1. Põllukultuuride temperatuurikindlust kontrollitakse veevannis (soovitavalt termostaadiga).
8.2. Staphylococcus aureus'e tüve 906 ja 4-päevase Mycobacterium'i tüve B-5 igapäevased kultuurid, mida kasvatati vastavalt MPA-l (pH = 7,2-7,4) ja 2% glütserooliagaril, pestakse maha soolalahusega (5 ml Petri tassi kohta). ), filtreeriti läbi puuvillase marli filtri ja lahjendati vastavalt optilisele standardile kontsentratsioonini 2 miljardit mikroobikeha 1 ml-s. Saadud suspensioonid valatakse 1 ml-s kolme steriilsesse katsutisse (üks katsuti iga kokkupuute kohta), mis asetatakse veevann eelkuumutatud temperatuurini 60°C. Temperatuuri jälgimiseks kastetakse vanni termomeeter, mis on kastetud veega katseklaasi. 15-25-35 minuti pärast võetakse katseklaasidest 1 ml suspensiooni Staphylococcus aureus'e tüve 906 kultuuri suspensiooniga ja 40-60-80 minuti pärast katseklaasidest kultuuri suspensiooniga. Mycobacterium tüvi B-5 iga kokkupuute kohta ja 0,5 ml inokuleeriti kahes katseklaasis 5 ml liha-peptooni või 2% glütserooli puljongiga.
8.3. Põllukultuure hoitakse termostaadis temperatuuril (37+/-1) °C 7 päeva. Tulemuste esialgne arvestus viiakse läbi 24–48 tunni pärast (Staphylococcus aureus, tüvi 906 kultiveerimine) ja 72–96 tunni pärast (Mycobacterium, tüvi B-5 kultiveerimine).
8.4. B.cereus kultuuride kuumakindluse testimiseks asetatakse kolm eossuspensiooniga katseklaasi 15-25-35 minutiks keeva veevanni. Selle aja möödudes inokuleeritakse 0,5 ml vastavast katseklaasist saadud suspensiooni kahte katseklaasi liha-peptoonpuljongiga (MPB) ja inokulatsioone inkubeeritakse 7 päeva temperatuuril (37+/-1) °C. Kontrolliks on katsekultuuri kuumutamata suspensiooni külvamine liha-peptooni või 2% glütserooli puljongis.
9. B. cereuse eoste aurukindluse määramine
9.1. B. cereuse eoste aurukindlust testitakse Oil-Mülleri aparaadis järgmiselt:
Vesi valatakse kolbi ja kuumutatakse keemiseni. Eelpõletatud võrgule asetatakse kaks nakatunud katseobjekti. Võre sisestatakse voolava auru toimetsooni. Pärast 3-minutilist aurutamist eemaldatakse testid ja inokuleeritakse kahte katseklaasi puljongiga. Põletatud võrgule tehakse uuesti kaks katset 4-minutilise kokkupuutega ja seda korratakse, suurendades säritust uuesti 1 minuti võrra 9 minutini. Külvatud katseobjektid asetatakse 7 päevaks termostaati temperatuuril (37+/-1) °C. Tulemuste esialgne arvestus toimub 48 tunni pärast.
9.2. Oil-Muller aparaadi saab asendada laia pikliku kaelaga 0,75-1 l kolviga. Auru vabastamiseks lõigatakse kolvi korkkork vertikaalselt 1/3 võrra ära. Läbi korgi tuleks tõmmata traat, mille otsas on 3-3,5 cm läbimõõduga metallvõrk, millele asetatakse katseobjektid.
9.3. Kui kultuurid kasvavad pärast formaliini, sobiva temperatuuri ja auruga kokkupuudet liha-peptooni või 2% glütserooli puljongis, on vaja uuesti külvata tahkele toitekeskkonnale, et kontrollida esialgse kultuuri kasvu olemasolu.
9.4. Bioloogiliste NIR-ILC indikaatorite valmistamiseks kasutatud kultuure kontrollitakse termilise ja formaliinikindluse suhtes vähemalt kord 6 kuu jooksul.
10. Bakterioloogilise tõrje läbiviimine
10.1. Rakkude asjade desinfitseerimise efektiivsuse bakterioloogiline kontroll toimub punktis 4.4.3. toodud meetodil valmistatud ja pakkelindile pakitud bioloogilise BIK-ILC indikaatorite abil. Sel viisil valmistatud kandjad nummerdatakse ja asetatakse 10x15 cm kotti, millel on spetsiaalne sahtel maksimaalse termomeetri jaoks. Kotid paigutatakse kontrollpunktidesse (punkt 3.3.2.).
10.2. Pärast bioloogiliste näitajate testimist eemaldatakse NIR-ILC kottidest, asetatakse kilekotti ja toimetatakse koos vastava suunaga laborisse edasiseks uurimiseks.
10.3. Bakterioloogilises laboris viiakse läbi uuring, järgides aseptika reegleid. Selleks eemaldatakse pakendist bioloogilised indikaatorid BIK-ILC ja lisatakse (ka kontrollnäidikutele) 1 ml bromtümoolsinise indikaatoriga värvilist toitekeskkonda ja 0,5 ml sama söödet Eppendorfi tuubidesse.
Bioloogiliste näitajatega Staphylococcus aureus ja B.cereus kultuure inkubeeritakse termostaadis temperatuuril (37+/-1) °C 2 päeva.
Tulemused registreeritakse igapäevase visuaalse kontrolliga. Kultuuri kasvu korral muutub söötme värvus indikaatori juuresolekul sinakasrohelisest kollaseks. Sel juhul külvatakse isoleeritud kultuuri võrdluseks kontrolliga tihedale toitainekeskkonnale – liha-peptoni või munakollase-soola agarile.
10.4. Ebarahuldavate tulemuste leidmisel teavitab bakterioloogialabor juhendajat telefoni teel. raviasutus ja saadab talle järelduse bakterioloogilise kontrolli tulemuste kohta.
Kui kasv tuvastatakse vähemalt ühes bioloogilise indikaatori kultuuris, viiakse läbi kambri töö teine kontroll. Samal ajal kontrollitakse hoolikamalt selle tehnilist seisukorda, asjade laadimise kiirust ja nende lahtrisse paigutamise õigsust.
Lisa 1
Meedia ettevalmistamine
1. Nisuagar
1 kg purustatud nisuterale või nisutangule (Artek, Poltava) lisada 2 liitrit destilleeritud vett. 18-24 tunni pärast tühjendage infusioon ettevaatlikult (terade pigistamata) ja lisage destilleeritud vett 2 liitrini. Seejärel lisage 50 g agar-agarit, kuumutage kuni täieliku lahustumiseni ja keerake aeglase jahutamise ja parema sadestumise jaoks paksu puuvillakihi sisse. Järgmisel päeval lõigake sade ära, sulatage sööde ja seadke pH = 7,4. Pärast seda valatakse sööde katseklaasidesse ja steriliseeritakse voolava auruga kolm päeva järjest 40-60 minutit. Pärast steriliseerimist niita.
2. Lihapeptoonpuljong bromtümoolsinise indikaatoriga
Lisage 1000 ml liha-peptooni puljongile 5 g glükoosi, kuni viimane on täielikult lahustunud, filtreerige lahus läbi puuvillase marli filtri ja lisage 2,5 ml bromtümoolsinise 1% alkoholilahust. Määra pH=7,3+/-0,1; Valage viaalidesse ja steriliseerige 110°C juures 30 minutit.
Söötme värvus muutub eoste idanemisel sinakasrohelisest kollaseks.
3. Glütseriini puljong (2%)
1000 ml liha-peptooni puljongile pH=7,2+/-0,1 lisada 20 ml glütseriini, steriliseerida 3 minutit temperatuuril 120 °C.
4. Glütserooli agar (2%)
1000 ml liha-peptooni puljongile pH=7,2+/-0,1 lisada 20 g agar-agarit ja 20 ml glütseriini. Steriliseerige 30 minutit temperatuuril 120 °C.
5. Kartuli-glütseriini sööde
Toores kartul (kiirusega 200 g kooritud kartuleid 1000 ml kraanivee kohta), peske hoolikalt, koorige ja koorige, lõigake väikesteks viiludeks, valage kraanivesi ja keeda peale keetmist 30 minutit (noort kartulit ei tohi tarbida!). Pange puljong kõrvale ja filtreerige see külmas olekus läbi puuvillase marli filtri. Filtraadi maht viiakse 1000 ml-ni ja pH on 7,2+/-0,1. Lisage 5 g peptooni ja 25 g agarit. Kuumutage segades, kuni agar on täielikult sulanud, filtreerige läbi puuvillase marli filtri, seejärel lisage 1 g mett ja 20 ml glütseriini, valage viaalidesse ja steriliseerige 120 °C juures 30 minutit. Pärast steriliseerimist on viaalides olev sööde kaldu.
6. Sahharoosi-želatiini sööde
100 ml destilleeritud veele lisada 1 g želatiini ja 5 g sahharoosi. Laske söötmel 2 tundi toatemperatuuril seista. Seejärel steriliseeriti autoklaavis 120°C juures 30 minutit.
2. lisa
Katselabori keskusesse
Järeldus
Bioloogilised näitajad NIR-ILC NN______ ei andnud katsekultuuri kasvu.
Bioloogilised näitajad NIR-ILC NN____ andsid kasvu algsele kultuurile.
"__" _________ 200__ labor __________
(Kinnitatud ENSV korraldusega M3 03.09.91 nr 254)
Kvaliteedinäitajad
Kontrolli desinfitseerimis- ja steriliseerimismeetmete üle meditsiiniasutustes teostavad sanitaar-epidemioloogilised ja desinfitseerimisjaamad samaaegselt sanitaar- ja epideemiavastase režiimi kontrolliga.
Kontrolli teostatakse: visuaalselt, bakterioloogiliste ja keemiliste meetoditega, samuti spetsiaalsete instrumentide ja seadmete abil.
Kontroll viiakse läbi järgmise kordusega:
Nakkusliku ja kirurgilise profiiliga haiglates (dispansaarides), sünnitusabi-, laste-, hambaraviasutustes ja osakondades, vereülekande jaamades (osakondades), kiirabi jaamades (osakondades) arstiabi- vähemalt kord kvartalis.
Terapeutilistes haiglates, kliinikutes, kliinilistes (immunoloogilistes, seroloogilistes, biokeemilistes jne) laborites - vähemalt 2 korda aastas.
Teistes raviasutustes ja osakondades - vähemalt kord aastas.
Dekambriplokkide taga, dekambrid, tsentraliseeritud steriliseerimine, laod ja ruumid desinfitseerimisvahendite tsentraliseeritud ettevalmistamiseks - vähemalt 1 kord kvartalis.
Järelevalveobjekti jälgimisel määravad nad kindlaks sanitaarseisundi, pööravad erilist tähelepanu desinfitseerimisvahendite ja -meetodite õigele valikule, pesu-, desinfitseerimis- ja steriliseerimisvahendite tõhususele, võetud meetmete õigeaegsusele ja ulatusele, säilitustingimustele. desinfitseerimis- ja steriliseerimisvahendite puhul nende valmistamise ja kasutamise õigsus, pehme ja kõva inventariga seadmed, seadmed, meditsiinitooted jne.
Desinfitseerimise täielikkuse ja kvaliteedi hindamiseks on soovitatav:
ühekordse bakterioloogilise kontrolli läbivaatuse käigus tuleks haiglates valida tampooniproovid vähemalt 0,5 tampooni voodi kohta ja ambulatoorsetes kliinikutes - 0,1 tampooni visiidi kohta vahetuses (rutiinse läbivaatuse käigus võetakse tampoonid sanitaar-indikatiivseks mikrofloora, vastavalt patogeense ja tinglikult patogeense mikrofloora epidemioloogilistele näidustustele);
uurida esmaste desinfektsioonivahendite, ema- ja töölahuste proove vähemalt 5 proovi erinevat tüüpi 100 voodikoha kohta;
viima läbi desinfektsioonivahendite jääkkoguse kiirtestid 20 igat tüüpi proovi 100 voodi kohta;
jälgida desinfitseerimiskambrite tõhusust, asetades kolmele tasapinnale 9-15 bakteriaalset (keemilist) testi, olenevalt desinfitseerimiskambri tüübist ja mahust, samuti vastavalt tabelile. 1.
Steriliseerimise ja meditsiiniseadmete kasutamise aseptiliste tingimuste järgimise kontroll toimub vastavalt tabelile. 2.
Steriliseerimistoimingute kontroll tsentraliseeritud steriliseerimisruumides hõlmab kõikide tööetappide korralduse kontrollimist steriliseerimiseelse puhastuse kvaliteedi, steriliseerimisseadmete töö ja ruumide sanitaarseisundi hindamisega.
Tsentraliseeritud steriliseerimisruumide sanitaarseisundi bakterioloogilise kontrolli käigus on uurimisobjektideks õhk ja erinevate objektide pinnad (töölauad, seadmed, inventar, aparatuur). Tsentraliseeritud steriliseerimisrajatiste rahuldava sanitaarseisundi kriteeriumid on tabelis toodud näitajad. 3.
Steriliseerimiseelse puhastus- ja steriliseerimisvahendite (lahustega steriliseerimine) aastane vajadus määratakse, lähtudes:
kehtivad standardid, õpetlikud ja metoodilised ning normatiivdokumendid NSVL tervishoiuministeerium;
andmed planeeritud töö mahu kohta konkreetses raviasutuses;
ravimite tarbimine üksikute meditsiiniseadmete või komplektide jaoks (näiteks: ühe süstla jaoks, keskmiselt, - 10Q cm3 desinfitseerimislahust, ühe komplekti jaoks emakakaela uurimiseks - 2,5 dm3 lahust, ühe komplekti manustamiseks - 3 l lahust, jne jne), võttes arvesse toote täielikku sukeldumist lahusesse ja selle õõnsuste täitmist lahusega.
Desinfitseerimiskambrite töö jälgimine
Tabel 1
Kontroll meditsiiniseadmete steriliseerimise ja aseptiliste tingimuste järgimise üle, et vältida haiglanakkusi
Tabeli 2 lõpp
Märkused:
Õhukeskkonna kontroll operatsioonisaalides, sünnitustubades ja muudes steriilsete toodete massilise kasutamise kohtades toimub vastavalt näidustustele.
Tsentraliseeritud steriliseerimisruumide sanitaarseisundi jälgimisel võetakse iga uuringu käigus steriilses tsoonis vähemalt 10 bakterioloogilist tampooni. Sanitaar-indikatiivset mikrofloorat on lubatud külvata mitte rohkem kui 1% valitud tampooni koguarvust.
Õhukeskkonna kontrolli tulemuste hindamine toimub vastavalt tabelile. 3.
Tabel 3. Õhu ja pindade mikroorganismidega saastumise näitajad
Tsoon | tuba | Tingimused | Mikroobikehade arv | |
1m5 õhus | 100 m2 pinna kohta | |||
mittesteriilsed | Vastuvõtt, pesemine, ettevalmistamine, steriliseerimine (steriliseerimise laadimispool) | Enne tööd | Mitte rohkem | Mitte rohkem kui 250 |
Töö ajal | Mitte rohkem kui 1500 | Mitte rohkem kui 500 | ||
Steriilne | Steriliseerimine (mahalaadimise pool). Steriilse materjali hoiuruum | Enne tööd | Mitte rohkem kui 500. | Mitte rohkem kui 100 |
Töö ajal | Mitte rohkem | Mitte rohkem kui 150 |
Märge. Ruumides, kus tehakse detsentraliseeritud steriliseerimist, on ruumide sanitaarseisundi näitajad mittesteriilse tsooni näitajad.
Steriliseerimiseelse puhastamise ja steriliseerimise desinfitseerimisrežiimide järgimise rahuldava hinnangu kvartali (aasta) tööde retrospektiivse analüüsi käigus määravad järgmised näitajad:
Desinfitseerimise kvaliteedinäitajad:
mittepatogeense mikrofloora inokuleerimine kontrollobjektidelt mitte rohkem kui 2% valitud bakterioloogilistest tampooniproovidest;
desinfitseerimislahuste alahinnatud kontsentratsioonide määramine mitte rohkem kui 5% võetud proovidest;
mitterahuldavate kiirtestide tuvastamine desinfektsioonivahendite jääkkoguse kohta mitte rohkem kui 2% igat tüüpi tarnitud proovide arvust;
testitava bakterioloogilise kontrolli vastavus kambri desinfitseerimise režiimile.
Steriliseerimiseelse puhastuse kvaliteedinäitajad:
positiivsete proovide puudumine vere jääkkoguse kohta;
sünteetiliste detergentide aluseliste komponentide jääkkoguse ja õliravimite jääkide positiivsete proovide puudumine.
Igast päevas töödeldud tooteliigist kuulub kontrolli alla vähemalt 1%.
Mitterahuldavate proovide korral töödeldakse seda tootepartii korduvalt, kuni need on täielikult puhastatud ja pestud.
Sterilisaatorite kvaliteetse töö näitajad:
Mikroorganismide kasvu puudumine kõigi bioloogiliste testide külvamisel toitekeskkonnas;
Keemiliste näitajate algoleku (värvus, agregatsiooni olek) muutus;
Mikrofloora külvamise puudumine steriilsetest toodetest.
Auru- ja õhusterilisaatorite tõhususe jälgimine toimub 3-6-9 bakteriaalse (keemilise) testi paigaldamisega kolmele tasapinnale, olenevalt aparaadi mahust ja tüübist.
Desinfitseerimiskambrid on seadmed või seadmed nendes auru-, auru-õhu-, auru-formaliini-, õhu- ja gaasidesinfitseerimiseks ja -desinfitseerimiseks. Desinfitseerimiskambrid võimaldavad rõivaste, voodipesu, villa, vaipade, jäätmematerjali, raamatute ja muude asjade usaldusväärset desinfitseerimist või desinfitseerimist. Kõik muud pehmete asjade desinfitseerimismeetodid, välja arvatud keetmine, ei taga desinfitseerimise ja desinfitseerimise täielikkust ning keetmisega desinfitseerimine on vastuvõetamatu ülerõivaste, voodipesu (padjad, tekid, madratsid) ja mõnede muude pehmete asjade puhul. Desinfitseerimiskambrites kasutatakse füüsikalist (aur, auru-õhu segu, kuiv kuum õhk), keemilist (formaldehüüd jne) või mõlemat. desinfektsioonivahendid. Kaamerad paigaldatakse meditsiini- ja ennetus- ning sanitaar- ja epidemioloogiaasutustesse, samuti tööstusettevõtetesse.
Peaaegu kõik desinfitseerimiskambrid koosnevad tegelikust kambrist (töökamber), millesse asjad kastetakse, soojusallikast (aurukatel, tulekambrist, elektrisoojendist), mõõteriistadest (termomeetrid, psühromeetrid, manomeetrid, kaitseklapid), sisestusseadmetest. keemilised ained(düüsid, aurustid), ventilatsiooniseadmed (ventilaatorid, auruväljastajad jne).
Sõltuvalt desinfitseerimiseks kasutatavast ainest jagatakse kambrid mitmeks tüübiks. Peamised neist on:
- aur-õhk-formaliin - kasutage auru-formaldehüüdi segu ja niisutatud kuumutatud õhku;
- aur - desinfitseerimine toimub küllastunud veeauruga;
- õhk (kuiv rasv) - tegutsemisvahendid on kuumutatud õhk;
- gaas - kasutage vääveldioksiidi, etüleenoksiidi, metüülbromiidi, kloropikriini jne;
- kombineeritud - kohandatud desinfitseerimiseks ja desinfitseerimiseks mitme vahendiga (aur, õhu-auru segu, formaldehüüd).
Seadme olemuse järgi on desinfitseerimiskambrid statsionaarsed, mobiilsed ja teisaldatavad. Statsionaarsed kaamerad paigaldatakse spetsiaalsetesse ruumidesse (kammersaalidesse), mis on vaheseinaga jagatud kaheks isoleeritud osaks või pooleks. Kambrid on monteeritud vaheseinale nii, et nende uksed avanevad eri pooleks ning asjade kambriline desinfitseerimine toimub puhastes ja määrdunud ruumides. Ruumi osa, kuhu asju desinfitseerimiseks võetakse ja kust asju peale laaditakse, nimetatakse laadimis(määrdunud) pooleks ning ruume, kus toimub kaamerate mahalaadimine ja asjade väljaandmine, nimetatakse mahalaadimis(puhtaks) pooleks. Viimane sisaldab ventiile, termomeetreid ja muid osi, mis juhivad kambri tööd.
Kaamerate paigaldamise ruumides peavad olema riiulid asjade sorteerimiseks, kellaajad kaamerate tööaja jälgimiseks, individuaalsed kapid kombinesoonide ja personali isiklike riiete jaoks, kraanikausid, käterätikud, seep. Kui soojusallikas (aurukatel, kamin) asub väljaspool kambrit, tuleks tagada mugav side viimasega (telefon või kellaalarm); side peaks toimuma ka peale- ja mahalaadimisosade vahel. Mahalaadimise osas peaksid olema juhised iga kaameraga töötamiseks, samuti sisemised eeskirjad.
Mobiilkaamerad on paigaldatud autodele. Kaasaskantavad kambrid on kokkupandavad ja poolkokkupandavad ning neil ei ole oma liikumissuunda. Mobiilsed ja kaasaskantavad kaamerad ei vaja eriruume, kuid personali, aga ka asjade ja kaamerate enda kaitsmiseks vihma ja lume eest ning soojuskadude vähendamiseks on soovitatav ehitada kaamera kohale varikatus või paigaldada need kinnistesse hoonetesse.
Mobiilsete või teisaldatavate kambritega töötamisel peaksid nende kasutuskohas olema eraldi riiulid saastunud ja desinfitseeritud asjade jaoks, käekell ning kaasaskantav kraanikauss rätiku ja seebiga.
Desinfitseerimine, sõltuvalt desinfitseeritavate esemete vastupidavusest desinfitseerimisvahendile, võib olla aur-õhk, aur-formaliin ja aur. Desinsektsioon võib olla õhk, aur ja aur. Enne kambrisse laadimist desinfitseerimiseks (desinfestatsiooniks) ette nähtud esemed sorteeritakse, võttes arvesse materjali, millest need on valmistatud, auru-õhk, auru-formaliin, auru, õhu desinfitseerimiseks (desinfestatsiooniks) mõeldud esemeteks. Tugevalt niisutatud asjad kuivatatakse enne töötlemist aur-õhk-formaliin ja õhukambrites.
Enne esimese partii esemete laadimist desinfitseerimiseks (desinfestatsiooniks) soojendatakse külmkambrit suletud ustega. Küttetemperatuur vastavalt välistermomeetrile on 50 - 60 ° С - auru-formaliini desinfitseerimisega ning nahk- ja karusnahast asjade auru-õhkdesinfitseerimisega: 80 ° С - auru-õhk ja auruga desinfitseerimisega ja õhu desinfitseerimisega. Määratud temperatuuridel toimub kuumutamine; 10-15 minuti jooksul, kui kamber on metallist; 20-30 minuti jooksul, kui kamber on tellistest või betoonist.
Laadimisruumist laaditakse asjad kambrisse ühtlaselt kogu töömahu ulatuses. Laadimiskiirus, mis on 1 m 2 kambri (käru) põrandapinnast või 1 m 3 aurukambri töömahust, ja desinfitseerimistemperatuur sõltuvad nakkustekitaja tüübist, desinfitseerimisvahendist, materjalist desinfitseeritud esemetest (vill, puuvill, karusnahk jne). Karusnahast ja nahast riided riputatakse karusnahaga (voodriga) väljapoole, vältides üksteisega kokkupuutumist. Lühikeste kasukate kaenlaaluse piirkonna paremaks soojendamiseks torgatakse varrukatesse 65–70 cm pikkune tikk või pannakse need spetsiaalsetele riidepuudele. Vildist saapad ja saapad riputatakse tagurpidi, saapad riputatakse võrkudesse või asetatakse vankrirestidele.
Desinfitseeritud asjad laaditakse kambrist maha tühjenduskambrisse. Karusnahast riideid raputatakse mahalaadimisel kondensaadipiiskade eemaldamiseks või hoitakse neid mahalaadimisruumis (sirgendatud kujul) 10-15 minutit. Muud desinfitseerimise tulemusena niiskust saanud esemed kuivatatakse kambris endas, kui selleks on seadmed, või mahalaadimisruumis.
Aega, mis kulub kõigi desinfitseerimistööde tegemiseks kambrites, nimetatakse desinfitseerimistsükliks. See tsükkel seisneb kambri soojendamises, asjade laadimises, asjade kuivatamises, temperatuuri ja rõhu tõstmises ettenähtud väärtusteni, formaldehüüdi sisestamises kambrisse (auru-formaliini meetodil), asjade hoidmises desinfitseerimisvahendite toimel, rõhu vähendamine normaalsele atmosfäärirõhule (aurukambrites), formaldehüüdi jääkide neutraliseerimine (auru-formaliini desinfitseerimisega), ventilatsioon ja asjade mahalaadimine.
Desinfitseerimistsükli üksikute etappide ja tööks ettevalmistamise kestus on keskmiselt:
- kambri eelkuumutamine (aur, aur-õhk-formaliin) ja asjade kuivatamine - 10-15 minutit;
- temperatuuri tõus (ja aurukambrites ja rõhul) - 10 - 15 min;
- sisestamine formaldehüüdi kambrisse - 3 - 10 min;
- kokkupuude - 10 minutit kuni 4 tundi;
- rõhu langus kambris normaalseks (aurukambrites) - 2 - 10 min;
- formaldehüüdi neutraliseerimine ja kambri ventilatsioon asjadega - 10 - 40 min;
- asjade mahalaadimine - 5 - 10 min.
Desinfitseerimiskambrit teenindavad kaks desinfitseerijat. Üks neist, mis asub laadimisruumis, sorteerib desinfitseerimise (desinfestatsiooni) esemed ja laadib need kambrisse. Teine desinfitseerimisseade, mis asub mahalaadimise (puhas) sektsioonis, juhib desinfitseerimisprotsessi, laadib desinfitseerimisaja lõppedes kambrist välja asjad, sorteerib need ja tagastab vastavalt nende asjadele. Samuti peab ta kaamera päevikut. Desinfitseerimiskambreid hooldades peab üks töötaja pärast kambri laadimist enne kambri puhtasse ossa kolimist võtma seljast hommikumantli, mütsi või salli ja laadima need kambrisse. Pärast seda peate käed põhjalikult seebiga pesema ja selga panema puhtad kombinesoonid.
Aurukatlad desinfitseerimiskambrite soojusvarustuseks. Aurukatlad on seadmed, milles vesi muutub kuumutamise tulemusena auruks. Tööstus toodab statsionaarseid ja mobiilseid katlaid. Aurukatel koosneb katlast endast, milles tekib aur, restiga ahjust ning juht- ja mõõteriistadest.
Kamin on aurukatla osa, milles põletatakse kütust. Tulekambrid on sisemised välised. Sisemised asuvad katla sees, peamiselt leegitorudes. Välised tulekambrid sobivad paremini halva kvaliteediga kütuse põletamiseks. Ahjudesse asetatakse tulerestid. Need koosnevad üksikutest restidest, mis moodustavad restiala. Restide vahel on vahed, mille kaudu siseneb ahju õhk, mille hapnik on põlemisprotsessiks vajalik. Väikekatelde resti asemel paigaldatakse mõnikord restiplaat.
Katla töö ja töötava ohutuse reguleerimiseks on iga aurukatel varustatud juhtimis- ja mõõteriistadega (liitmikega): manomeetriga aururõhu mõõtmiseks katlas, veenäitava klaasiga (lame) veetaseme jälgimine aurukatlas, kaitseklapp (hoob või vedru), et hoiatada rõhu suurenemist üle ettenähtud. Aurukatlad on varustatud ka mitmesuguste sulgeventiilide, käsipumpade, aurupihustite ja muude seadmetega. Katelde hooldus ja käitamine määratakse erireeglitega, mille rakendamine on kohustuslik.
Spetsiaalselt statsionaarseid desinfitseerimiskambreid teenindavatest aurukateldest on enim kasutatavad Shukhovi süsteemi vertikaalkatlad, Lechapeli katlad ja vertikaalsete tuletorudega katlad. Kasutada võib kõiki kambrite asukohas saadaolevaid aurukatel.
Mobiilsete desinfitseerimiskambrite ja duššide auruga varustamiseks toodab tööstus RI-1, RI-2 ja RI-3 tüüpi aurukatelde, mille on välja töötanud insenerid Rjabov ja Ignatochkin. Need katlad on klassifitseeritud kombineeritud katlaks, kuna nende küttepinna moodustavad leegitoru ja katla torud, milles vesi ringleb.